Rendimiento diagnóstico del agar sangre con filtro versus agar karmali para el diagnóstico de Campylobacter en coprocultivo

Autores/as

DOI:

https://doi.org/10.24265/horizmed.2016.v16n3.08

Palabras clave:

Campylobacter, Agar, Sangre, Diarrea, Agar karmali, Diagnóstico

Resumen

Objetivo: Evaluar el rendimiento diagnóstico del agar sangre con filtro (ASF) en comparación con el agar Karmali (AK) para el diagnóstico de Campylobacter spp en coprocultivo. Material y métodos: Se realizó una investigación de tipo experimental prospectiva de corte transversal en el Hospital Nacional Docente Madre-Niño “San Bartolomé” se evaluaron muestra de heces con examen coprológico funcional reactivo para inflamación. Las muestras fueron sembradas en ASF y en AK e incubadas hasta 72 horas en microaerofilia. La diferenciación de especies se realizó con la hidrolisis de hipurato. Resultados: Se recolectaron un total de 287 muestra positivas. El aislamiento de Campylobacter en ASF y AK fue de 78,3% y 21,7%, respectivamente. La sensibilidad fue de 90,9% para ASF. El tiempo de crecimiento promedio fue de 32,7 ± 11 horas (p<0,59) y la contaminación de medios de cultivo de pacientes positivos fue de 61,7% para AK. Se aislaron un 74,8% de especies de Campylobacter no jejuniConclusiones: El agar sangre con filtro presenta un mayor rendimiento diagnóstico que Agar Karmali para el aislamiento de Campylobacter en un tiempo relativamente menor y demostrando ser más costo-efectivo que el medio de aislamiento selectivo. Además, se aisló principalmente Campylobacter no jejuni en neonatos e infantes, donde acontecen la mayoría de infecciones.

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Friedrich MJ. Climate Change Linked With Increase in Diarrheal Disease. JAMA2013; 309(19):1985.

PATH. Diarrehal disease: Solutions to defeat a global killer. Washington 2006.

World Health Organization (WHO), United Nations Children's Foundation (UNICEF). Joint statement on clinical management of acute diarrhoea. Geneva 2004.

World Health Organization. Global Water Supply and Sanitation Assessment, WSSCC/UNICEF.Geneva 2000; 2.

Black R, Lanata CF. Epidemiology of diarrheal in developing countries. 1st edition. New York: Raven Press. Ltd; 1995: 13-36.

Perales DM, Camiña M, Quiñones C. Infección por Campylobacter y Shigella como causa de Diarrea Aguda infecciosa en niños menores de dos años en el distrito de La Victoria, Lima-Perú. Rev Perú Med Exp Salud Publica 2002; 19(4).

Tam CC, Higgins CD, Neal KR, Rodrigues L, Millership S, 'OBrien S, et al. Chicken consumption and use of acid-supppressing medications as risk factors for Campylobacter enteriris, England. Emerg Infect Dis 2009; 15:1402-8.

Sheppard SK, Dallas JF, Strachan NJ, MacRae M, McCarthy ND, Wilson DJ, et al. Campylobacter genotyping to determine the source of human infection. Clin Infect Dis 2009;48:1072-8.

CDC. Vital signs: incidence and trends of infection with pathogens transmitted commonly trough food-foodborne disease active surveillance network, 10 U.S. sites, 1996-2010. MMWR Morb Mortal Wkly Rep 2011;60(22):749-55.

Rees HJ, Soudain ES, Gregson NA, Hughes AC. Campylobacter jejuni infection and Guillain-Barré syndrome. N Engl J Med. 1995; 333:1374-1379.

Matsusaki S, Katayama A, Yamagata H, Tanaka K, Nakamura T. Campylobacter enteritis in Japanese children. J Diar Dis Res. 1984; 2(2):88-9.

Dekeyser P, Gossuin-Detrain M, Butzler JP, Sternon J. Acute enteritis due to related Vibrio: first positive stool cultures. J Infect Dis. 1972; 125:390-392.

Butzler, JP, Dekeyser P, Detrain M. et al. Related vibrios in stool. J Pediatr. 1973; 82: 493.

Bützler JP. Campylobacter infection in man and animals. Boca Raton: CRC Press; 1984.

Skirrow, MB. Campylobacter enteritis: a "new" disease. Br Med J 1977; 2:9-11.

Karmali MA, Simor AE, Roscoe M, Fleming PC, Smith SS, Lane J. J. Clin. Microbiol. 1986; 23:456-459.

Hunt JM, Abeyta C, Tran T. “Campylobacter”. In: FDA-CFSAN. Bacteriological analytical manual. 9th ed. Maryland: AOAC International; 2001:7.

Canduro PF, Mezzari A, Dias CAG. Stool culture: prevalence of pathogenic microorganisms in a private laboratory in Porto Alegre, Brazil. Rev Bras Patol Clin. 1987; 23:152-6.

Ruiz AP, Perea LB. Indicaciones y valoración clínica del urocultivo y coprocultivo. Medicine. 2010;10(49):3317-20.

CLSI publication M40-A2 -. Quality Control of Microbiological Transport Systems; Approved Standard—Second Edition Clinical and Laboratory Standards Institute, Wayne, PA,USA, 2014.

Prats PG, Mirelis OB, Muñoz BC, Rabella GN. Indicaciones del coprocultivo, aspectos prácticos. Medicine. 1998;7(74):3456- 7.

Miller JL. A guide to specimen management in clinical microbiology. 2th ed. American Society for Microbiology. Washington, D.C. 1998.

Instituto de Salud Carlos III. Normas para el transporte de muestras con destino al centro nacional de microbiología. Madrid: Servicio Madrileño de Salud; 2002.

Crespo SD, Escribano GE, Lorente OS. Manual de Recogida, transporte y conservación de muestras. Laboratorio de microbiología. Albacete: Complejo Hospitalario de Albacete. 2010.

Engberg, J, On SL, Harrington CS, et al. Prevalence of Campylobacter, Arcobacter, Helicobacter, and Sutterella spp. in human fecal samples as estimated by a reevaluation of isolation methods for campylobacters. J Clin Microbiol. 2000; 38: 286-291.

Steele TW, McDermott SN. Technical note: the use of membrane filters applied directly to the surface of agar plates for the isolation of Campylobacter jejuni from faeces. Pathology. 1984;16:263–265.

PAHO. Zoonoses and Communicable Diseases Common to Man and Animals. Bacterioses and Mycoses. 3rd ed. Washington, D.C.: PAHO; 2001: 67-71.

Winn W, Allen S, Janda W. Koneman's Color Atlas and Textbook of Diagnostic Microbiology. 6th ed. Philadelphia: Lippincott Williams & Wilkins; 2006: 373-79.

CLSI publication M35-A2 -. Abbreviated Identification of Bacteria and Yeast; Approved Guideline—Second Edition. Clinical and Laboratory Standards Institute, Wayne, PA,USA, 2008.

CLSI publication M100-S22 -. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing; Twenty-second Informational supplement. Clinical and Laboratory Standards Institute, Wayne, PA,USA, 2012.

CLSI publication M45-A2 -. Methods for Antimicrobial Dilution and Disk Susceptibility Testing of Infrequently Isolated or Fastidious Bacteria; Approved Guideline-Second edition. Clinical and Laboratory Standards Institute, Wayne, PA, USA. 2010.

Larrosa HA, Ruiz PM, Aguilar BS. Utilidad del estudio de las heces para el diagnóstico y manejo de lactantes y preescolares con diarrea aguda. Salud Publica Mex. 2002;44:328-334.

Altman DG, Machin B, Bryant TN, Gardner MJ. Statistics with confidence. 2a ed. Bristol: BMJ Book; 2000.

Díaz C, Vizcaya L, Velasco J. Evaluación de un medio y la técnica de filtración para el aislamiento de Campylobacter sp. en un grupo de riesgo. Rev Fac Farm. 2003; 45 (1): 14-18.

Fernández H, Vera F, Villanueva MP, García A. Occurrence of Campylobacter species in healthy well-nourished and malnourished children. Braz J Microbiol. 2008;39:56-8.

Fernández H, Vera F, Villanueva MP. Especies de Arcobacter y Campylobacter en aves y mamíferos del sur de Chile. Arch Med Vet. 2007;39(2):163-165.

Modolo JR, Giuffrida R. Campylobacter upsaliensis isolated from young dogs with and without diarrea. Rev Soc Bras Med Trop. 2004; 37(1):72-73.

Patiño GL. Estudio comparativo entre la microscopia convencional y el método de cultivo con microfiltros para la identificación de Campylobacter sp en muestras fecales de pacientes del HNGAI durante el 2° semestre del 2002. [Tesis]. Lima: Universidad Nacional Mayor de San Marcos. Facultad de Medicina Humana; 2002.

Pinto AM. Aplicación del Método de Filtración para la Detección de Campylobacter spp en Heces.

Fundación de Tecnología de Alimentos, Sucre – Bolivia; 1999.

Steel TW, McDermont SN. Technical note: The use of membrane filters applied directly to the surfaces of agar plates tor the isolation of Campylobacter jejuni from feces. Pathology. 1984; 16:263-265.

Gossens H, Vlaes L, Galand IM, C Van den Borre, Butzler JP. Semisolid blood-free selective-motility medium for the isolation of campylobacters from stool specimens. J Clin Microbiol. 1989;27(5):1077-80.

Endtz HP, Ruijs GJ, Zwinderman AH, van der Reijden T, Biever M, Mouton RP. Comparison of six media, including a semisolid agar, for the isolation of various Campylobacter species from stool specimens. J Clin Microbiol. 1991; 29(5):1007-10.

Ash C. Antibiotic resistance: The new apocalypse? Trends in Microbiology. 1996;4(10):371-372.

van der Waaji, D. Colonization resistance of the digestive tract in conventional and antibiotic treated mice. J Hydrol. 1971 69,405-411.

Prescott J, Baggot J, Walter R. Terapéutica Antimicrobiana en Medicina Veterinaria. 3ra Edición. Buenos Aires: Intermédica; 2002.

Ruppé E, Andremont A. Causes, consequences, and perspectives in the variations of intestinal density of colonization of multidrug-resistant enterobacteria. Front. Microbiol. 2013; 4:129.

Murray P. R., Baron E. H., Pfaller M. A., Tenover F. C. and Yolken R. H., (Ed.), Manual of Clinical Microbiology, 6th Ed., American Society for Microbiology, Washington, D.C. 1995.

World Health Organization. The increasing incidence of human Campylobacteriosis. Report and Proceedings of a WHO Consultation of Experts. Copenhagen. WHO/CDS/ CSR/APH/2000;4: 2001.

Castillo M, Gómez F, Laos M, Salinas M. Campylobacter spp en pacientes con cuadro diarreico que acudieron a Hospitales de la ciudad de Ica, Perú. Marzo-mayo 1999. Rev Peru Med Exp Salud Publica. 2003;20(3):S6.

World Health Organization. Water, Sanitation and Hygiene Links to Health: Facts and Figures. Geneva 2004.

Nósov SD. Enfermedades infecciosas infantiles. Primera ed. URSS: Editorial Mir.; 1980:363.

UNICEF. Breastfeeding: Foundation for a Healthy Future. New York: UNICEF; 1999.

Joy EL, Simon C, Jelka Z. 4 Million Neonatal Deaths: When? Where? Why? The Lancet. 2005; 365(9462): 891-900.

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Publicado

2016-09-27

Cómo citar

1.
Moya-Salazar J, Pio-Dávila L, Terán-Vásquez A, Olivo-López J. Rendimiento diagnóstico del agar sangre con filtro versus agar karmali para el diagnóstico de Campylobacter en coprocultivo. Horiz Med [Internet]. 27 de septiembre de 2016 [citado 16 de abril de 2024];16(3):58-65. Disponible en: https://www.horizontemedico.usmp.edu.pe/index.php/horizontemed/article/view/471

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